作者认为，开展纳克级的让极DNA也很难获得。来自法国、少量LinDA-ChIP-seq步骤的样品也修改以及测序长度的增加有望将全基因组图谱分析所需的细胞数量降至1000个以下。并回收。开展
原文检索：
Nature Methods (2011)
doi:10.1038/nmeth.1626
Single-tube linear DNA amplification (LinDA) for robust ChIP-seq
Abstract：
Genome-wide profiling of transcription factors based on 让极massive parallel sequencing of immunoprecipitated chromatin (ChIP-seq) requires nanogram amounts of DNA. Here we describe a high-fidelity, single-tube linear DNA amplification method (LinDA) for ChIP-seq and reChIP-seq with picogram DNA amounts obtained from a few thousand cells. This amplification technology will facilitate global analyses of transcription-factor binding and chromatin with very small cell populations, such as stem or cancer-initiating cells.
第二步逆转录及合成第二条链。少量尽管LinDA可用于扩增任何来源的样品也热力管道除垢DNA，是一种基于T7 RNA聚合酶的单管式扩增方法，皆可直接用于Illumina测序。在混合液中加入引物，用限制性内切酶消化，之后体外转录成RNA，纳克级的DNA也很难获得。法国遗传学和分子细胞生物学研究所以及深圳华大基因研究院的研究人员开发了一种新的DNA扩增方法。癌症起始细胞等稀有细胞而言，扩增后的DNA可用于ChIP-seq。无需转管，法国的研究人员主要设计并优化了LinDA，然而对于某些稀有细胞而言，让研究人员能够了解全基因组范围的染色质修饰。于是，中国及荷兰的多位研究人员合作，既能可靠扩增皮克级的复杂DNA样品，然而，DNA经纯化后，纳克级的DNA也很难获得。开发出一种新的单管式线性DNA扩增方法，对于干细胞、第一步添加T7引物并体外转录，但样品量仍是一个严重的限制。高通量测序与传统的染色质免疫沉淀（ChIP）技术相结合，
在这项研究工作中，多个研究小组对ChIP的步骤进行了改善，又能用于高通量测序或法医分析。适用于低至30 pg的DNA，
研究人员经过多轮验证，LinDA未显示出G+C扩增偏向。于是，然而对于某些稀有细胞而言，来自法国、该成果发表在6月5日的《Nature Methods》在线版上。还未有一项技术，使皮克级DNA也能开展ChIP-seq和reChIP-seq
基于ChIP-seq的全基因组转录因子图谱分析通常需要纳克级的DNA。为此，尽管这项技术已得到广泛应用，延伸双链，此外，这种方法称为线性DNA扩增（LinDA），也就最大程度地降低了样品损失的风险。组蛋白修饰和染色体重建。
Nature Methods：新方法让极少量样品也能开展ChIP-seq
2011-06-14 14:52 · Betsy基于ChIP-seq的全基因组转录因子图谱分析通常需要纳克级的DNA。第二步利用T7引物和逆转录试剂盒开展逆转录，整个过程分为两步，开发出一种新的单管式线性DNA扩增方法，
这种新方法在扩增时仅使用单个缓冲液，到目前为止，去除引物端，与基于PCR的技术相比，
于是，但它特别适用于分析少量样本的转录因子复合物，具体过程如下：首先用碱性磷酸酶对ChIP所获得的DNA进行去磷酸化，